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lunes, 12 de agosto de 2024

!Qué hice bien!

Las partes del cerdo y cómo cocinarlas. Del investigador también se aprovecha todo

El semestre va desde el 24 de abril hasta el 15 de agosto de 2024

He impartido dos asignaturas, prácticas de bioquímica y prácticas de parasitología. En total 3 paralelos de prácticas bioquímica y 5 paralelos de prácticas de parasitología, es decir, 24 horas por semana durante 16 semanas. 

Contenido online generado en el semestre Ordinario I de 2024

He generado los siguentes productos en los blogs Actuaciencia y Bacteriasactuaciencia y en el canal Actuaciencia de Youtube

Práctica carbohidratos

Un hígado, cuatro experimentos de proteínas

Equilibrio ácido base en el cuerpo humano

Microscopía óptica del agua que retienen los musgos

Hirudo medicinalis, parásito medicinal

El problema de la toxicidad de los antiparasitarios

Práctica PCR región ITS de Candida albicans

¿Son las terapias CarT el futuro de los tratamientos de hongos de difícil tratamiento?

¿Cuál es el concepto erroneo de estos videos sobre CAR-T?

Los alumnos en grupos de 2, 3 o 4 personas han tratado diversos aspectos de la parasitología. Siempre, desde una perspectiva ecuatoriana. Cada trabajo tiene su versión podcast subida a youtube.


Publicaciones





Además he mandado otros tres artículos que se encuentran en revisión y un libro "Los antibióticos veterinarios en la Unión Europea" que también se encuentra en revisión. 

Tutor de trabajos de titulación de la carrera de medicina

Titulación de la estudiante Salma Dayuna Mendoza Giler “Diferencias marcadas y estimación de riesgo de casos de leucemia en población en edad laboral entre provincias del Ecuador” y de la estudiante Danna Raphaella Arciniega Alcívar, con número “Tolerancia in vitro de biopelículas polimicrobianas de Staphylococcus haemolyticus y Candida albicans a la actividad antiinfecciosa de la dalbavancina en combinación con anidulafungina”.

miércoles, 19 de junio de 2024

Práctica carbohidratos

¿Qué es la prueba de glucosa en la orina?

La prueba de glucosa en la orina mide la cantidad de glucosa que hay en la orina. La glucosa es un tipo de azúcar. Es la principal fuente de energía de las células en el cuerpo. Su sangre lleva la glucosa a las células.

Normalmente, la orina contiene muy poca o nada de glucosa. Pero si tiene demasiada glucosa en la sangre, los riñones se desharán de la glucosa extra a través de la orina. Por ello, un nivel alto de glucosa en la orina puede significar que su glucosa en la sangre es alta también, lo que puede ser una señal de diabetes. Si su nivel de glucosa en la orina es alto, su profesional de la salud puede solicitar una prueba de glucosa en sangre para ayudar a hacer un diagnóstico.

Identificación de polisacáridos con lugol

Introducción

Las plantas almacenan energía por medio de un polisacárido de nombre almidón, el cual se conforma de largas cadenas de moléculas de glucosa unidas mediante enlaces glucosídicos. El contenido de almidón varía dependiendo de la planta. El almidón se obtiene, por lo general, del maíz, el trigo, el arroz, la patata o la yuca. Si proviene de un tubérculo suele denominarse fécula; si es de un cereal, almidón. Las propiedades del almidón varían en función del producto del cual se extrae. Ello se debe a la longitud de las cadenas, el tamaño y forma del grano del almidón y sobre todo, a la proporción de los dos tipos de cadenas que lo forman (amilosa y amilopectina). La amilosa (lineal) hace predominar la estructura gelificada ya que forma tramas tridimensionales; la amilopectina (ramificada) produce en los líquidos una mayor viscosidad, es por esto que el arroz con una proporción elevada de amilopectina resulta muy viscoso y pegajoso y por tanto, muy apropiado para la elaboración de sushi.

Fig. 1. Molécula del almidón

 La prueba del yodo, Lugol, es una reacción química usada para determinar la presencia o alteración de almidón u otros polisacáridos. El reactivo de Lugol, que contiene una mezcla de yodo y yoduro, permite reconocer polisacáridos, particularmente el almidón por la formación de una coloración azúl-violeta intensa y el glucógeno y dextrinas por la formación de coloración roja. Esta reacción es el resultado de la formación de cadenas de poliyoduro a partir de la reacción del almidón con el yodo presente en la solución de Lugol. La amilosa, el componente del almidón de cadena lineal, forma hélices donde se juntan las moléculas de yodo, formando un color azul oscuro a negro.

Hipótesis

La prueba de Lugol será positiva en aquellas verduras o frutas con mayor cantidad de almidón, como por ejemplo la papa, mientras que en otras como la frutilla su coloración no será tan intensa, el agua no debe presentar reacción alguna por lo que funciona como control negativo del experimento

Materiales

Lugol
1 papa
50 gr de hígado de pollo
1 fresa
placas petri o tubos de ensayo
gotero
manojo de espinacas
agua
parrilla
vaso de precipitado
tubos falcon de 15 ml

Procedimiento

Colocar una muestra de cada fruta y verdura dentro de los tubos de ensayo, colocar con el gotero unas cuantas gotas de lugol y observar la coloración de cada muestra. Calentar a baño maría los tubos y observar el cambio de color.

 Resultados

La coloración producida por el Lugol se debe a que el yodo se introduce entre las espiras de la molécula de almidón, entre mayor sea la cantidad de almidón, más intensa será la coloración.

Por lo tanto, en la papa  las coloraciones deben ser intensas, mientras que en la fresa no tanto. El agua no genera ninguna reacción. Con la muestra de hígado el Lugol reacciona por la presencia del glucógeno, pero la coloración es más rojiza que azul-violeta. La coloración que desaparece al calentar, porque se rompe la estructura que se ha producido, pero vuelve a aparecer al enfriar la muestra.

Video 1: Prueba de Lugol (Yodo-Yoduro) al Almidón Hidrolizado y sin Hidrolizar

Curiosidad:

El parásito protozoario, Iodamoeba buschilii, tiene una gran vacuola de glucógeno que toma color café cuando se tiñe con lugol.

Fig. 2. Iodamoeba bütschlii. Quistes de forma y tamaño variables con vacuolas de glucógeno de color marrón oscuro. Concentración fecal por flotación con sulfato de zinc (método de Fausto). Teñido con solución de yodo de Lugol. Objetivos 40x y 100x.
Foto: ©Nemeckova

Test de Benedict

El test de Benedict es el más usado para detectar presencia de glucosa en la orina. Cuando se detecta cierta cantidad de glucosa en la orina podemos sospechar que el paciente padece de diabetes.

Este método detecta azúcares reductores que son los que tienen su OH del C anomérico libre. Como la mayoría de los azúcares están en forma cíclica, el reactivo de Benedict es básico, esto lineariza a los carbohidratos cíclicos como la glucosa dejando su OH del carbono anomérico libre y listo para reaccionar con el reactivo de Benedict.

Fig. 3. El método de Benedict se basa en la reducción de algunos iones metálicos por la glucosa dando un cambio en la coloración. Gracias a este método podemos determinar si existen carbohidratos en nuestra muestra


Esta reducción de los iones metálicos como el Cu++ no es específica de la glucosa. Por lo tanto, la reacción puede ser originada por cualquier sustancia reductora presente en la orina (creatinina, ácido úrico, ácido ascórbico y otros azúcares reductores). El fundamento de esta reacción radica en que, en un medio alcalino, el ion cúprico Cu++, que es cedido por el sulfato cúprico CuSO4, es capaz de reducirse por efecto del grupo aldehído del azúcar (CHO) a su forma cuprosa Cu+. Este nuevo ion se observa como una precipitado rojo ladrillo correspondiente al óxido cuproso Cu2O
Fig. 4. Resultados colorimétricos test de Benedict

‐ Poner en una gradilla cuatro tubos de ensayo, numerados del 1 al 4.
‐ Añadir en cada tubo 2 mL. de una solución diluida del azucar que se vaya a utilizar.
‐ A los tubos 3 y 4 añadir una pequeña cantidad de saliva.
‐ En el tubo 1, realizar la Reacción de Benedict: Añadir 1 mL de reactivo de Benedict y mezclar. Colocar el tubo a baño maría a 70°C, durante 5 minutos y luego dejar enfriar.
‐ En el tubo 2, realizar la Reacción de Lugol.
‐ Poner en el baño María a 37°C, a los tubos 3 y 4 (que contienen el almidón y la saliva), controlando la temperatura debido a que la enzima de la saliva funciona a 37°C. Dejar los tubos en el baño María durante 15 minutos.
‐ A continuación, realizar las siguientes reacciones: en el tubo número 3, realizar la Reacción de Fehling o Benedict. En el tubo número 4, realizar la Prueba del Lugol.

Fig. 5. Tubo 1: almidón más tinción de Benedict calentado a 70ºC para acelerar la reacción. Tubo 2: almidón más Lugol a temperatura ambiente. Tubo 3: almidón más saliva a 37ºC más tinción de Benedict. Tubo 4: almidón más saliva a 37ºC más Lugol.

Test de Fehling

Gracias al Instituto de Calamocha por la práctica

Fig. 6. La reacción de Fehling nos permite estudiar los azúcares reductores. Fuente

FUNDAMENTO Los monosacáridos y la mayoría de los disacáridos poseen poder reductor, que deben al grupo carbonilo que tienen en su molécula. Este carácter reductor puede ponerse de manifiesto por medio de una reacción redox llevada a cabo entre ellos y el sulfato de Cobre (II). Las soluciones de esta sal tienen color azul. Tras la reacción con el glúcido reductor se forma óxido de Cobre (I) de color rojo. De este modo, el cambio de color indica que se ha producido la citada reacción y que, por lo tanto, el glúcido presente es reductor. Esta propiedad permite determinar la concentración de una disolución de azúcar midiendo la cantidad de agente oxidante que es reducido, como ocurre en la determinación del contenido de glucosa en muestras de sangre u orina para detectar la diabetes mellitus.

TÉCNICA 

1. Poner en los tubos de ensayo 3ml de la solución de glucosa, maltosa, lactosa fructosa o sacarosa.

 2. Añadir 1ml de solución de Fehling A (contiene CuSO4) y 1ml de Fehling B (lleva NaOH para alcalinizar el medio y permitir la reacción) 

3. Calentar los tubos a la llama del mechero hasta que hiervan.

4. La reacción será positiva si la muestra se vuelve de color rojo y será negativa si queda azul o cambia a un tono azul-verdoso. 

5. Observar y anotar los resultados de los diferentes grupos de prácticas con las distintas muestras de glúcidos

Fig. 7. Reacción de Fehling. Fuente

Hidrólisis de la sacarosa

FUNDAMENTO La sacarosa es un disacárido que no posee carbonos anoméricos libres por lo que carece de poder reductor y la reacción con el licor de Fehling es negativa, tal y como ha quedado demostrado en el experimento 1. Sin embargo, en presencia de ClH y en caliente, la sacarosa se hidroliza, es decir, incorpora una molécula de agua y se descompone en los monosacáridos que la forman, glucosa y fructosa, que sí son reductores. La prueba de que se ha verificado la hidrólisis se realiza con el licor de Fehling y, si el resultado es positivo, aparecerá un precipitado rojo. Si el resultado es negativo, la hidrólisis no se ha realizado correctamente y si en el resultado final aparece una coloración verde en el tubo de ensayo se debe a una hidrólisis parcial de la sacarosa.

Fig. 8. Sacarosa

TÉCNICA

1. Tomar 3ml de solución de sacarosa y añadir 10 gotas de ClH diluido.

2. Calentar a la llama del mechero durante unos 5 minutos.

3. Dejar enfriar.

4. Neutralizar añadiendo 3ml de solución alcalina.

5. Realizar la prueba de Fehling como se indica en el experimento 1.

6. Observar y anotar los resultados.

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Aprovechando que tenemos hígado...

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EJERCICIOS: 

EJERCICIO 1: Describe qué ocurre en esta reacción. a) ¿Por qué el almidón en presencia de lugol se vuelve azul? b) ¿Por qué cuándo se enfría se vuelve incoloro? c) ¿Por qué se vuelve a colorear cuando se calienta?


EJERCICIO 2: Describe lo que ocurre en la reacción. A) Fehling positiva B) Fehling negativa
Respuesta incorrecta: La reacción A va a cambiar de color porque es positiva mientras que la reacción B no porque es negativa.

Solución: el cambio de color que se origina en las reacciones positivas se debe al carácter reductor de los monosacáridos y de la mayoría de los disacáridos (excepto la sacarosa). Si el glúcido que se investiga es reductor, se oxidará dando lugar a la reducción del sulfato de cobre, de color azul, a óxido de cobre, de color rojo-anaranjado.

EJERCICIO 3: Normalmente, la orina contiene muy poca o nada de glucosa. ¿Por qué crees que ocurre esto? Relaciona tu respuesta con la primera reacción que tiene lugar en la glucólisis.

EJERCICIO 4: Tengo hojas de espinaca congelada ¿Afecta al peso que estén a -20º C de temperatura? Razona tu respuesta.

EJERCICIO 5: Tengo 1 Kg de glucógeno y 1 kg de grasa ¿Cuál tiene más energía? Razónalo relacionándolo con las distintas propiedades hidrofílicas e hidrofóbicas que exhiben ambos. 

Solución: La grasa tiene más energía que el glucógeno. Esto se debe a que 1 kg de grasa contiene aproximadamente 9 kcal por gramo, mientras que 1 kg de glucógeno contiene alrededor de 4 kcal por gramo.

Desde el punto de vista químico, las grasas son moléculas altamente reducidas (principalmente compuestas por ácidos grasos, que son hidrofóbicos) y almacenan más energía en sus enlaces, en comparación con los carbohidratos como el glucógeno, que es una molécula hidrofílica y altamente ramificada con una mayor proporción de oxígeno en comparación con la grasa.

Además, la grasa se almacena sin agua, mientras que el glucógeno se almacena con una cantidad significativa de agua (alrededor de 3-4 gramos de agua por gramo de glucógeno). Esto significa que el peso de almacenamiento del glucógeno incluye no solo la energía almacenada en la molécula de glucógeno en sí, sino también el agua, lo que reduce la densidad energética total por kilogramo. Por lo tanto, 1 kg de grasa proporcionará más energía que 1 kg de glucógeno.

EJERCICIO 6: Tengo dos células A y B. En ambas hay tres moléculas de glucosa. En A están en forma monomérica y en B en forma polimérica. Si ambas células se encuentran en estrés hídrico ¿Cómo se encontrará la glucosa, como en la célula A o como en la célula B? Razona tu respuesta


EJERCICIO 7: Voy a realizar un experimento para comprobar qué tubérculo tiene mayor concentración de almidón. A) Añado 3 gramos de yuca homogenizada en 3 ml de agua en un tubo. En un segundo tubo añado 5 gramos en 3 ml. En un tercer tubo añado 3 gramos en 5 ml de agua. Añado 5 gotas de colorante en el primer tubo, en el segundo y el tercer tubo. ¿Qué error hemos cometido? Razona tu respuesta. 

EJERCICIO 8: Pesamos 1 gramo de sacarosa y 1 gramo de glucosa. ¿Tenemos el mismo número de moléculas? Razona tu respuesta. 

EJERCICIO 9: ¿Es lo mismo definir la masa de un producto en gramos o en moles?

EJERCICIO 10: Pesamos 1 gramo de almidón (un polímero de glucosa). Pesamos 1 gramo de glucosa. ¿Tenemos el mísmo número de moléculas? Razona tu respuesta

EJERCICIO 11: Tenemos que homogenizar hígado con el mortero. A Pesamos y homogenizamos B Homogenizamos y pesamos C Homogenizamos encima de la balanza.

EJERCICIO 12: Tenemos que añadir 5 gotas. No tenemos pipetero. ¿Podemos utilizar una micropipeta? 

EJERCICIO 13: Tenemos que añadir 0.5 gramos ¿Utilizarías una micropipeta? Razona tu respuesta

EJERCICIO 14: Test de Fehling. ¿Por qué la sacarosa es negativa y la fructosa positiva para este test? Razona tu respuesta.

Solución: La sacarosa es un disacárido que no posee carbonos anoméricos libres por lo que carece de poder reductor. La reacción con el de Fehling es negativa en presencia de ClH (ácido clorhídrico) y en caliente la sacarosa se hidroliza e incorpora la molécula de agua y se descompone en monosacáridos (glucosa y fructosa)

EJERCICIO 15: Test de lugol. ¿Por qué el tubo con almidón se tiñe de negro?

EJERCICIO 16: El test de Benedict, la coloración no es fija, depende de la temperatura ¿Por qué?

EJERCICIO 17: El test de Benedict detecta la glucosa en sangre ¿Es normal tener glucosa en sangre? ¿Por qué es importante detectarlo?

EJERCICIO 18: ¿Por qué la lactosa si es disacárida reacciona con el test de Fehling y la sacarosa, que también es un disacárido, no reacciona?

Solución: es porqué la sacarosa no es un azucar reductor y la lactosa es reductora

EJERCICIO 19: Test de lugol. ¿Cuál sería un control negativo? ¿Cuál sería un control positivo?

Solución


miércoles, 14 de diciembre de 2022

El Curare: De la Selva Amazónica a los quirófanos del Mundo

Autores: Ricardo Guerrero, Mia Proaño, Nicole Muñoz y Leonardo Pimentel. Alumnos de medicina de UEES

 ¿Cómo sería un mundo sin anestesia?

En respuesta a esta interrogante ya tenemos una respuesta, de forma controlada y de manera médica, la anestesia fue usada por el odontólogo Horace Wells y fue usando óxido nitroso en 1844. Sin embargo en el pasado se buscaban formas alternativas de evitar o reducir el dolor provocado por las diversas situaciones a las que estaban expuestos, de aquí en Ecuador los shuar adiestraron y dosificaron el curare. Antiguamente, no existía la posibilidad de dar una dosis exacta para intervenir en procedimientos, en cambio se usaban ​​la ingesta de alcohol y etanol, o la mezcla de hierbas, como adormidera, mandrágora o cannabis y en ciertos casos comprometía a los pacientes. Es por eso que en el pasado algunos pacientes fallecieron debido a la falta de conocimiento en cuanto a dosis.

 La selva supera al humano en cuanto a evolución molecular

El término “curare” o “pareira” hace referencia a una serie de venenos de origen vegetal utilizados para la cacería desde tiempos de la colonia en América Latina. Esta planta era utilizada por los indígenas para untarlo en sus flechas y cerbatanas para cazar a sus presas. Esta civilización, sin herramientas ventajosas de por medio, descubrió que el “curare” produce parálisis progresiva, matando por asfixia. (Vídeo 1)

 

Vídeo 1: Indígena Shuar de Ecuador con una cerbatana. Fuente

 Los poderosos siempre presumiendo lo que no es suyo…

La palabra “curare” surgió mucho después, de hecho fue un nombre adaptado por los europeos. El verdadero término para esta planta era “ourari”, que se cree que proviene de dos palabras indígenas, “uría” que significa pájara y “eor” que significa matar.

 Fue posteriormente, que las lenguas europeas adoptaron términos como ourara, urali, urare, woorari, wourali, y finalmente curare, que es el que ha prevalecido.

 ¿Qué es en sí el curare?

 El curare es una enredadera cuya toxicidad en toda su totalidad se concentra especialmente en la parte de la corteza y de las hojas y era aprovechada por regiones de América del Sur y Central. (Figura 1)

Figura 1: Curare

La naturaleza es el mejor laboratorio

 La teoría que sostiene que los vikingos se asentaron incluso 500 años antes que Cristóbal Colón en América del Norte, que como prueba tenemos al  L’anse aux meadows, por lo que pensar que hay una historia mucho mayor a la que tenemos registrada con respecto a los bloqueadores neuromusculares derivados de la naturaleza no es necesariamente tan descabellado, incluso en esta cultura evidenciamos el uso de plantas y hongos psicoactivos que inducen al Trance en la batalla de los Berserkers o Ulfhednar.

El primer contacto histórico con el curare podemos verlo en la intervención de Colón con al continente americano, existen registros de cómo los indígenas, al tener un primer contacto con estas civilizaciones españolas, atacaron usando las cerbatanas, con dados cargados en curare, causando la muerte de quien fuera alcanzado con los dardos, la muerte por la interacción con el veneno era inevitable, los colonos entienden que los guerreros aborígenes usaban esto, pero no tenían un antídoto, sólo los indígenas lo sabían y por esta razón, tenían cierta ventaja dentro del campo de batalla.

 La imaginación otorgando información errónea

 La primera descripción del curare fue realizada por Pitreo Martine d´Anghiera, historiador y médico de origen italiano(no estuvo en América), el describió de manera errónea  la elaboración del curare ya que se la atribuyó a una secta de ancianas. Luego Nicolas Bautista Monarddes que no viajó a América sin embargo era un médico destacado considerado el padre de la farmacología describió la preparación del curare como un ritual mágico elaborado por brujas así como también reportó la inhalación del curare como peligroso y mortal.

 Otra descripción errónea y dramática fue realizada tras el regreso a Europa de Walter Raleigh, los efectos del curare fueron descritos de manera exagerada ya que aseguraban que las personas atacadas con flechas envenenadas sufrían de manera inimaginable, que en su lecho de muerte eran incapaces de llorar o gritar e incluso llegaban a morir locos y con los intestinos fuera del cuerpo.

 Europa empieza a buscar respuestas acerca del Curare

Luego de las terroríficas descripciones realizadas los europeos necesitaban respuestas sobre la naturaleza de este veneno por lo que fue llevado a Europa.  Debemos tomar en cuenta que el curare era usado, más no entendido. Una de las evidencias de tratamiento o la primera base para ‘entenderlo’ la conocemos de parte de Abbe Fontana, que realizó experimentos con curare en músculos de contracción voluntaria en 1780, en 1900 se descubrió que la fisostigmina es capaz de revertir o antagonizar los efectos del curare y en 1914 Henry Hallet describe la acción de la acetil colina y su papel dentro del tejido muscular, por lo que tenemos la diana del curare, Inhibir la acetilcolina.

 La señal dada por la acetilcolina en las fibras motoras finales neuromusculares, permite la relajación muscular, la D-Tubocurarina compite con la acetilcolina en un regimen de 1/1, causando que la relajación no sea posible, dejando al tejido afectado en una contracción forzada o mejor conocida como parálisis. 

 ¿Cómo de un veneno se pasa a ser una herramienta para el quirófano?

 Recordemos que el efecto venenoso se daba cuando era inyectado por los dardos, más cuando este se usa por vía oral tiene un efecto distinto. Lo mencionado, se debe a que se logró descubrir un componente clave en el curare que era la D-tubocurarina y una vez dosificado y administrado vía oral facilita la intubación del paciente, disminuye la dosis del anestésico principal y mejora el control de la ventilación mecánica. El hecho de que sea administrado de esta forma permite que sea metabolizado y excretado por el riñón y el hígado.

 ¿Cómo se aplica actualmente este descubrimiento en  la práctica?

 Luego de los experimentos de Bernard se empezó a utilizar el curare en casos de enfermedades que producen contracción muscular como la rabia y el tétanos, así como también en enfermedades convulsivas como la epilepsia. Si bien el curare era de ayuda, luego se encontraron con que el efecto no era permanente y cuando perdía su eficacia se presentaban dificultades como la depresión respiratoria llevando a la muerte.

 Hoy en día, el curare es utilizado como un bloqueante neuromuscular y su acción alcaloide-d-tubocurarina produce el bloqueo del impulso nervioso a nivel de la placa motora.

El curare se ha utilizado en tratamientos de convulsiones o espasmos musculares, síndromes neurológicos, y actualmente como anestesia con el objetivo de relajar los músculos durante la cirugía.